FAQ

네, 지원합니다. 당사는 온라인 렌티바이러스 플라스미드 디자인 툴인 piVector Designer를 제공하고 있습니다. piVector Designer에서 제공되는 다양한 용도의 플라스미드 백본(Backbone)은 당사에서 실험을 통해 기능 검증을 완료한 벡터입니다. 프로모터, 리포터/선별 마커, 조절 요소 및 polyA 등을 포함한 방대한 유전자 요소 라이브러리를 직접 선택하여 구성하실 수 있습니다. 아울러 박사급 기술 지원팀이 설계하신 플라스미드의 제작 타당성 및 최적화 가능성을 철저히 검토해 드립니다.

고객님께서는 렌티바이러스 제작을 위해 플라스미드 10 μg만 보내주시면 됩니다. 바이러스 패키징 공정에 앞서 당사에서 플라스미드 증폭(Amplification) 및 품질 관리(QC)를 직접 진행하며, 해당 플라스미드 준비 비용과 소요 기간은 서비스 견적에 이미 포함되어 있습니다. 생산 기준 소요량의 경우, 연구용(Research-grade) 렌티바이러스는 5E+07 TU 기준 약 300 μg, 1E+08 TU 기준 약 600 μg의 플라스미드가 요구됩니다. 반면 전임상용(Preclinical-grade) 렌티바이러스의 경우 5E+07 TU 기준 1.5 mg, 1E+08 TU 기준 3 mg의 플라스미드가 소요됩니다.

All equipment or tips in contact with lentivirus or virus-infected cells should be immersed in a 10% bleach solution for 20 minutes before disposal in biohazardous waste.

당사에서는 293T 부착 세포(Adherent cells) 또는 PCS01 부유 세포(Suspension cells)를 사용하고 있습니다.

PCS01 세포주는 HEK293 세포에서 유래한 단일 클론 부유 배양 세포주(Single-clone suspension cell line)입니다.

We utilize Opti-Medium as the buffer at a concentration of 50μl/mL for lentivirus storage.

바이러스 역가는 일반적으로 두 가지 형태로 표시됩니다. 세포 감염 능력을 나타내는 감염 역가(Infectious titer/기능적 역가)는 주로 TU/mL(Transduction Units per mL)로 표기되며, 물리적 역가(Physical titer)는 바이러스 입자 수인 VP/mL(Viral Particles per mL)로 측정됩니다. 물리적 역가는 시료 내에 존재하는 바이러스의 총량을 의미하며, 대개 p24와 같은 바이러스 캡시드 단백질 농도나 바이러스 핵산량을 분석하여 정량합니다. 반면 감염 역가는 바이러스가 표적 세포에 실제로 침투하여 발현할 수 있는 유효 활성을 반영하므로, 일반적으로 물리적 역가보다 100배에서 1000배가량 낮게 산출됩니다. 감염 중복도(MOI)를 정확하게 계산하기 위해서는 감염 역가를 직접 측정하는 것이 이상적이지만, 시험 과정이 다소 복잡하고 많은 노동력이 요구됩니다. PackGene의 렌티바이러스 패키징 규격은 형질도입 후 역가(Post-transduction titer)를 기준으로 표기되므로, 단순 p24 측정 기반의 물리적 역가보다 실제 세포 실험 환경에서 훨씬 더 정확하고 신뢰성 높은 활성 역가를 제공합니다.

형질도입 단위(Transduction unit, TU)는 동결 보관 후 최종 측정되므로, 추가적인 동결-해동(Freeze-thaw) 반복으로 인한 급격한 역가 저하를 방지하기 위해 출고 전 별도의 농도 조정은 진행하지 않습니다.

필요하신 경우, 고객님께서 바이러스 감염(Infection/Transduction) 실험 진행 시 용도에 맞춰 직접 희석하여 농도를 조정해 사용하시기를 권장합니다.

대부분의 바이러스 공급 업체는 주로 qPCR이나 p24 ELISA 분석법을 사용하여 렌티바이러스 역가를 직접 측정합니다. 특히 전통적인 p24 ELISA 키트는 문헌에 가장 널리 보고된 측정법으로, 정제된 재조합 바이러스나 네이티브 바이러스의 역가 분석에 적합합니다. 그러나 정제되지 않은 조상등액(Crude supernatant) 상태에서는 바이러스 입자로 조립되지 않은 유리 p24 단백질이 과발현되어 높은 농도로 존재할 수 있으며, 이는 역가의 심각한 과대평가(Overestimation)를 초래합니다. PackGene은 이러한 문제를 방지하기 위해 형질도입 후 qPCR(Post-transduction qPCR)을 통해 실제 감염 역가를 측정하는 방식을 채택하고 있습니다. 이를 통해 과대평가에 대한 우려를 원천 차단하고, p24 기반 물리적 역가 대비 100~1000배가량 실효성 있는 정확한 감염 역가 데이터를 제공하여 실험의 재현성을 보장합니다. 추가로 렌티바이러스가 형광 단백질을 발현하는 경우, 바이러스의 연속 희석 배수별 명시야 및 형광 현미경 이미지를 분석하여 형질도입 역가를 2차적으로 교차 검증하고 있습니다.