재조합 AAV(rAAV)를 세 개의 플라스미드로 나누어 공동 전사(co-transfection) 하는 핵심 이유는
👉 안전성 + 기능 분리 + 생산 효율 때문이다.
즉, 각 플라스미드가 서로 다른 역할을 담당하도록 설계된 것이다.
1. 세 개의 플라스미드는 각각 어떤 역할을 하나?
1️⃣ 전이 플라스미드 (Transfer / Vector plasmid)
👉 실제로 발현하고자 하는 유전자
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구조:
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ITR – 프로모터 – 목적 유전자 – polyA – ITR
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역할:
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AAV 입자에 포장될 유전체를 제공
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핵심 포인트:
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ITR 사이의 서열만 AAV에 포장됨
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바이러스 복제·구조 유전자 없음 → 안전성 높음
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2️⃣ Rep/Cap 플라스미드 (Packaging plasmid)
👉 유전체 복제와 캡시드 형성 담당
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Rep:
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ITR 인식
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AAV 유전체 복제
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Cap:
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캡시드 단백질 VP1 / VP2 / VP3 암호화
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혈청형(AAV2/8/9 등) 및 조직 특이성 결정
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특징:
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ITR이 없기 때문에 자체적으로 포장되지 않음
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3️⃣ 보조 플라스미드 (Helper plasmid)
👉 아데노바이러스의 보조 기능 제공
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제공 단백질:
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E2A
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E4
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VA RNA
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역할:
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HEK293 세포에서 AAV의 효율적인 복제 및 조립 가능하게 함
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장점:
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실제 아데노바이러스 감염 불필요 → 더 안전하고 조절 가능
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2. 왜 하나의 플라스미드로 만들지 않을까?
🚫 이유 1: 안전성 문제
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모든 요소를 하나의 플라스미드에 넣을 경우:
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복제 가능한 AAV (rcAAV) 생성 위험 증가
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분리하면:
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Rep/Cap에는 ITR이 없어 포장 불가
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전이 플라스미드에는 Rep/Cap이 없어 복제 불가
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🚫 이유 2: AAV의 제한된 포장 용량
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AAV 최대 포장 용량 ≈ 4.7 kb
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Rep + Cap 유전자만 해도 4 kb 이상
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목적 유전자와 함께 하나의 유전체에 담는 것은 불가능
🚫 이유 3: 유연성 부족
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세 플라스미드 시스템은:
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동일한 전이 플라스미드 사용
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Cap만 교체하여 다양한 혈청형(AAV2/9/PHPeB 등) 제작 가능
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한 번의 벡터 제작으로 다양한 응용 가능
3. 왜 ‘세 플라스미드’인가? 두 개나 네 개는 왜 아닌가?
| 시스템 | 특징 |
| 3 플라스미드 (가장 일반적) | 안전성, 효율, 실험 편의성의 균형 |
| 2 플라스미드 | Helper + Rep/Cap 통합, 단순하지만 유연성 낮음 |
| 4 플라스미드 | Rep과 Cap 분리 → 안전성 ↑, 전사 효율 ↓ |
재조합 AAV를 세 개의 플라스미드로 나누어 전사하는 이유는, 복제 가능한 바이러스를 생성하지 않으면서 목적 유전자만을 안전하고 효율적으로 포장하기 위함이다.
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